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Elle stimule également le développement des racines et constitue le principal acide aminé de la sève. Arginine: actif dans la stimulation de la photosynthèse et retarde le processus de sénescence. A une action sur la vitesse des processus biologiques et sur la force de résistance de la plante face aux maladies, aux stress,.... Aspartate: a une action sur la force de résistance de la plante face aux maladies, aux stress,... Représente une source d'azote pour la plante et il participe à de nombreux processus métaboliques. L'aspargine est le transporteur d'azote aminé le plus important dans la plante. Cystéine: a une action sur la réduction du soufre dans la plante. Participe à la réduction assimilatoire du sulfate dans les chloroplastes. Elle sert de "porte d'entrée" du soufre réduit dans toutes les molécules organiques, comme le glutamate l'est pour l'azote réduit. De la cystéine dériveront ensuite tous les autres composés soufrés de la cellule, en particulier la méthionine et le glutathion.
Pour cela il te faut: De la ninhydrine (encore), une colonne chromatographique (type échangeuse d'ions) et des échantillons des 20 acides aminés naturelle (et protéogénique) PUR. Ici tu base l'identification sur le temps de rétention des acides aminés, selon leurs charges (le temps où il reste dans la colonne) après fixation et élution. En gros, tu fais passer les acides aminés PUR un à un dans la colonne et tu mesures le temps (donc le volume d'élution en réalité) de rétention de ce type d'acide aminé dans la colonne. Tu identifie le(s) tubes qui contiennent les AA en les colorant à la ninhydrine. Je te conseillerai de faire des tube de 1 mL chacun pour bien différencier cela... Entre chaque AA pur tu régénères la colonne (tu la "nettoie") par de la base ou de l'acide selon le type de colonne. Et tu fais cela pour chaque acide aminé pur! Tu fais alors un graphique f(Volume d'élution) = Intensité de coloration de la nynhydrine, pour chaque AA, je te conseille de placer tout les pics sur le même graph, sa sera plus simple.
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